Análisis Ex Vivo de los Residuos en Canales Radiculares Aplanados de Dientes Vitales y No Vitales Tras la Preparación Biomecánica con Instrumentos Rotatorios de Ni-Ti

El propósito de este estudio fue evaluar la presencia de debris apical que queda en el tercio apical de los conductos radiculares aplanados de dientes vitales y no vitales después de la preparación biomecánica con instrumentos rotatorios de Ni-Ti. Se utilizaron incisivos mandibulares humanos recién extraídos en este estudio. Los dientes tenían indicación clínica para extracción y fueron sometidos a pruebas de vitalidad pulpar en frío y examen radiográfico. Dieciocho dientes fueron seleccionados y asignados aleatoriamente a dos grupos (n=9), de acuerdo con el diagnóstico clínico, es decir, vitalidad pulpar o necrosis pulpar. Los conductos fueron instrumentados con el sistema rotatorio ProTaper NiTi en la siguiente secuencia: S1 - hasta el tercio medio; SX - en el tercio cervical; S2 - hasta el tercio apical; y S1, F1, F2, F3 - a la longitud de trabajo. Los conductos fueron irrigados con hipoclorito de sodio al 1%, secos y sometidos al procesamiento histológico. Se analizaron secciones del tercio apical mediante un microscopio óptico (X40) acoplado a una computadora donde se capturaron y analizaron las imágenes utilizando softwares específicos. Se colocó una cuadrícula sobre estas imágenes para evaluar el área total del conducto y las áreas con debris. La prueba U de Mann-Whitney no mostró diferencia estadísticamente significativa (p>0.05) entre los dientes con vitalidad pulpar (6.49 ± 3.39) y aquellos con necrosis pulpar (5.95 ± 2.22). Se puede concluir que la condición clínica del tejido pulpar no interferió con la cantidad de debris que queda en el tercio apical de los conductos radiculares aplanados preparados con instrumentos rotatorios de Ni-Ti.

Introducción

Durante la preparación de los conductos radiculares, la acción mecánica de los instrumentos y la acción química de los irrigantes ocurren simultáneamente, promoviendo la limpieza y desinfección del sistema de conductos radiculares. Mientras los instrumentos dan forma y ensanchan los conductos radiculares, las soluciones irrigantes actúan disolviendo el tejido orgánico (vital o necrótico) y eliminando desechos y microorganismos.

El conjunto de astillas de dentina, restos de pulpa y otras partículas que permanecen sueltas dentro del espacio intracanal después de la preparación biomecánica en áreas que no fueron limpiadas adecuadamente por la acción de soluciones químicas y archivos endodónticos se denomina generalmente desechos. La estructura amorfa compuesta de desechos de dentina, material orgánico y microorganismos que se produce por la instrumentación mecánica y se adhiere a las paredes del conducto radicular obstruyendo las aberturas de los túbulos dentinarios constituye la capa de smear.

Es bien conocido que el contenido interno de los dientes con pulpa vital y necrótica es diferente. Estas denominaciones reflejan condiciones clínicas de distintas patologías con sus respectivas características histológicas, que pueden dificultar la limpieza del conducto. Por lo tanto, se puede especular que la preparación biomecánica de los conductos radiculares puede producir desechos y capa de smear con diferentes características, indicando la necesidad de diferentes niveles de limpieza. Este proceso también está influenciado por la anatomía interna del diente, las técnicas y las soluciones irrigantes utilizadas durante la preparación del conducto.

Aunque la limpieza del conducto radicular ha sido ampliamente investigada, los estudios han mostrado resultados controvertidos e incluso contradictorios, especialmente en lo que respecta a los dientes utilizados como especímenes de prueba. Suffridge et al., por ejemplo, no informaron el origen de los especímenes. Se han utilizado dientes extraídos y almacenados en varios estudios. Usman et al. utilizaron dientes de cadáveres humanos, mientras que otros autores utilizaron dientes recién extraídos. Sin embargo, las condiciones pulpares durante los experimentos no han sido reportadas.

Considerando que el análisis crítico de la metodología de un experimento puede influir en sus resultados, la limpieza del conducto radicular debe evaluarse teniendo en cuenta las diferentes condiciones del tejido pulpar durante la extracción. Por lo tanto, el propósito de este ex vivo estudio fue evaluar los residuos que quedan en el tercio apical de los conductos radiculares aplanados de dientes vitales y no vitales después de la preparación biomecánica con el sistema rotatorio ProTaper.

Material y Métodos

Se utilizaron incisivos mandibulares humanos recién extraídos en este estudio. Los dientes tenían indicación clínica para extracción y la vitalidad pulpar se probó mediante la aplicación de un palito de hielo en el tercio cervical de la superficie bucal de los dientes durante 2 s. La pulpa se consideró vital cuando mostró una respuesta dolorosa positiva al estímulo frío, mientras que la necrosis clínica se determinó cuando no se observó reacción. Se tomaron radiografías periapicales para investigar la presencia de lesiones periapicales.

Los dientes extraídos se almacenaron en una solución de timol al 0.1% a 9°C hasta su uso. Posteriormente, se lavaron en agua corriente durante 24 h para eliminar posibles residuos de timol y se radiografiaron en dirección proximal y antero-posterior. Se seleccionaron dieciocho dientes con conductos radiculares simples, raíces completamente formadas y sin curvaturas acentuadas, y se asignaron aleatoriamente a dos grupos (n=9) según el diagnóstico clínico, es decir, vitalidad pulpar o necrosis pulpar.

Se realizó un acceso convencional a la corona y se introdujo pasivamente un archivo tipo K de tamaño 15 (Dentsply Maillefer, Ballaigues, Suiza) en cada conducto hasta que su punta fue vista en el foramen apical. La longitud de trabajo se estableció restando 1 mm de esta medida. El tercio cervical del conducto se preparó con fresas Gates-Glidden de tamaños 2 y 3 (Dentsply Maillefer) a baja velocidad.

Los canales se prepararon utilizando el sistema rotatorio ProTaper NiTi combinado con un motor Endo-Kill TC y una pieza de mano NML-F16R (32330, NSK, Tokio, Japón), regulando el par y la velocidad de cada archivo. Los instrumentos se utilizaron a una velocidad constante de 300 rpm en la siguiente secuencia: S1 - hasta el tercio medio con un par ≥ 1.0 N.cm; SX - tercio cervical con un par ≥ 1.0 N.cm; S2 - hasta el tercio apical con un par de 1.0 N.cm; S1 - hasta la longitud de trabajo con un par de 1.5 N.cm; F1 - hasta la longitud de trabajo con un par de 2.0 N.cm; F2 - hasta la longitud de trabajo con un par de 3.0 N.cm; y F3 - en la longitud de trabajo con un par de 3.0 N.cm. El diámetro apical se determinó con el instrumento F3. Para cada grupo experimental, se utilizaron dos juegos de instrumentos. Los canales se irrigaron con 3 mL de hipoclorito de sodio al 1% en cada cambio de archivo utilizando una jeringa de goma estéril y agujas Navytip (Ultradent, South Jordan, UT, EE. UU.). La aspiración se realizó con puntas Cappilary (Ultradent).

Se seccionó y retiró el tercio apical de cada diente. Las muestras se colocaron en recipientes plásticos etiquetados que contenían formalina tamponada al 10% durante 12 h para la fijación de los restos de tejido orgánico. Posteriormente, las muestras se lavaron en agua corriente durante 1 h, se desmineralizaron en ácido glicooacético al 10% y se incrustaron en parafina. Se obtuvieron cortes transversales en serie de 6 µm de grosor y se tiñeron con hematoxilina y eosina. Se seleccionaron diez secciones de cada raíz para el análisis histomorfométrico de la siguiente manera. Se eligió la primera sección de la porción apical más cercana a la longitud de trabajo. Luego, se descartaron 30 secciones secuenciales y se seleccionó la 31ª sección. Nuevamente, se descartaron 30 secciones secuenciales y se eligió la 31ª sección. Este procedimiento se repitió sucesivamente hasta que se seleccionaron 10 secciones de cada raíz. Las secciones transversales se examinaron con un microscopio óptico (Eclipse E 600; Nikon, Shinagawaku, Tokio, Japón) a una magnificación de X40. La imagen se capturó utilizando el software Adobe Premiere 5.1 (Adobe Systems Inc., San Jose, CA) y se analizaron utilizando el software Corel Photo Paint 10 (Corel Corporation Inc., MN USA). Se colocó una cuadrícula sobre estas imágenes para evaluar el área total del canal y el área con desechos. Se calculó el porcentaje de desechos apicales en el conducto radicular. Los datos se analizaron estadísticamente mediante la prueba no paramétrica de Mann-Whitney U al nivel de significancia del 5%.

Resultados

Se identificaron residuos en el 6.49 ± 3.39% del área del canal de dientes con vitalidad pulpar y en el 5.95 ± 2.22% del área del canal de dientes con pulpa necrótica. No se observó una diferencia estadísticamente significativa (p>0.05) entre los grupos.

Discusión

La preparación del conducto radicular es uno de los pasos más importantes en el tratamiento endodóntico. Su principal propósito es limpiar el conducto radicular y sus ramificaciones de la manera más completa posible, creando un ambiente saludable. Se han desarrollado varias técnicas e instrumentos para una mejor limpieza y conformación del sistema de conductos radiculares, especialmente en casos con variaciones anatómicas. Sin embargo, todavía se observan deficiencias en la preparación biomecánica, lo que lleva a una eliminación incompleta de residuos orgánicos e inorgánicos del espacio intracanal.

Los resultados de este estudio revelaron que la preparación biomecánica con el sistema de instrumentación rotativa ProTaper no promovió una eliminación completa de los residuos que permanecen dentro de los conductos aplanados, independientemente de la condición pulpar (vital o necrótica) e incluso después de la irrigación con hipoclorito de sodio al 1%. El hipoclorito de sodio se utiliza frecuentemente como lubricante y desinfectante del canal y tiene la capacidad de disolver restos de tejido pulpar. También actúa en áreas donde los archivos no pueden alcanzar.

Los resultados de este estudio sugieren que la anatomía del conducto radicular es en realidad más importante que la condición clínica de la pulpa para la limpieza. Las dificultades para limpiar conductos radiculares estrechos, curvados y aplanados ya se habían reportado. Asimismo, los resultados de este estudio revelaron la presencia de desechos dentro de los conductos radiculares mecanicamente instrumentados, principalmente en la región del istmo.

Otro factor a considerar es que la preparación biomecánica con instrumentos rotatorios de Ni-Ti es una técnica alternativa que trajo una serie de cambios conceptuales en comparación con la instrumentación manual, aumentando la eficiencia y disminuyendo el tiempo para la preparación endodóntica. El examen de las muestras bajo microscopía óptica reveló desechos en las áreas de los conductos que no fueron alcanzadas por los instrumentos rotatorios, independientemente de la condición de la pulpa. Estos resultados son consistentes con los de investigaciones anteriores, que reportaron que la instrumentación rotatoria de conductos radiculares aplanados no permitía el contacto del instrumento con todas las paredes del conducto.

En vista de esto, se deben desarrollar más protocolos clínicos para permitir que todas las áreas del conducto radicular puedan ser alcanzadas durante la preparación biomecánica. La instrumentación impulsada por motor ofrece un movimiento oscilatorio y puede proporcionar una mejor eliminación de desechos. Los hallazgos de este estudio amplían las perspectivas para futuras investigaciones que investiguen la eficacia de los instrumentos rotatorios para la limpieza del conducto radicular en dientes con diferentes condiciones pulpares.

Autores: Edi Wagner Sasaki, Marcos Aurélio Versiani, Danyel Elias da Cruz Perez, Manoel D. Sousa-Neto, Yara T. Correa Silva-Sousa, Ricardo Gariba Silva

Referencias:

1. Barbizam JVB, Fariniuk LF, Marchesan MA, Pécora JD, Sousa-Neto MD. Efectividad de las técnicas de instrumentación manual y rotatoria para limpiar conductos radiculares aplanados. J Endod 2002;28:365-366.
2. Baratto-Filho F, Carvalho Jr. JR, Fariniuk LF, Sousa-Neto MD, Pécora JD, Cruz-Filho AM. Análisis morfométrico de la efectividad de diferentes concentraciones de hipoclorito de sodio asociadas con instrumentación rotatoria para la limpieza del conducto radicular. Braz Dent J 2004;15:36-40.
3. Albrecht LJ, Baumgartner JC, Marshall JG. Evaluación de la eliminación de desechos apicales utilizando varios tamaños y conicidades de archivos Profile GT. J Endod 2004;30:425-428.
4. Spanó JCE, Barbin EL, Santos TC, Guimarães LF, Pécora JD. Acción del disolvente del hipoclorito de sodio sobre la pulpa bovina y propiedades fisicoquímicas del líquido resultante. Braz Dent J 2002;12:154-179.
5. Weiger R, Elayouti A, Löst C. Eficiencia de los instrumentos manuales y rotatorios en la conformación de conductos radiculares ovalados. J Endod 2002;28:580-583.
6. Hülsmann M, Gressmann G, Schäfers F. Un estudio comparativo de la preparación del conducto radicular utilizando instrumentos rotatorios de Ni-Ti Flexmaster y Hero 642. Int Endod J 2003;36:358-366.
7. Rödig T, Hülsmann M, Mühge M, Schäfers F. Calidad de la preparación de conductos radiculares distales ovalados en molares mandibulares utilizando instrumentos de níquel-titanio. Int Endod J 2002;35:919-928.
8. Siqueira Jr JF, Araújo MCP, Garcia PF, Fraga RC, Dantas CJS. Evaluación histológica de la efectividad de cinco técnicas de instrumentación para limpiar el tercio apical de los conductos radiculares. J Endod 1997;23:499-502.
9. Gutarts R, Nusstein J, Reader A, Beck M. In vivo eficacia de desbridamiento de la irrigación ultrasónica tras la instrumentación manual-rotatoria en molares mandibulares humanos. J Endod 2005;31:166-170.
10. Jung IY, Seo MA, Foaud AF, Spangberg LSW, Lee SJ, Kim HJ, Kum KY. Anatomía apical en raíces mesiales y mesiobucales de molares permanentes. J Endod 2005;31:5:364-368.
11. Mannocci F, Peru M, Sherriff M, Cook R, Pitt Ford TR. Los istmos de la raíz mesial de los molares mandibulares: un estudio de microtomografía computarizada. Int Endod J 2005;38:558-563.
12. Schäfer E, Schlingemann R. Eficiencia de los instrumentos rotatorios de níquel-titanio K3 en comparación con K-Flexofile de acero inoxidable manual. Parte 2. Efectividad de limpieza y capacidad de conformación en conductos radiculares severamente curvados de dientes extraídos. Int Endod J 2003;36:208-217.
13. Suffridge CB, Hartwell GR, Walker TL. Eficiencia de limpieza de archivos rotatorios de níquel-titanio GT y .04 cuando se utilizan en un micromotor rotatorio controlado por torque. J Endod 2003;29:346-348.
14. Fariniuk LF, Baratto-Filho F, Cruz-Filho AM, Sousa-Neto MD. Análisis histológico de la capacidad de limpieza de instrumentos endodónticos mecánicos activados por el sistema ENDOflash. J Endod 2003;29:651-653.
15. Ferreira RB, Alfredo E, Porto De Arruda M, Silva-Sousa YT, Sousa-Neto MD. Análisis histológico de la capacidad de limpieza de la instrumentación rotatoria de níquel-titanio con irrigación ultrasónica en el conducto radicular. Aust Endod J 2004;30:56-58.
16. Usman N, Baumgartner JC, Marshall JG. Influencia del tamaño del instrumento en el desbridamiento del conducto radicular. J Endod 2004;30:110-112.
17. Colak M, Evcil S, Bayindir Y, Yigit N. La efectividad de tres técnicas de instrumentación en la eliminación de Enterococcus faecalis de un conducto radicular: un estudio in vitro. J Contemp Dent Pract 2005;6:94-106.
18. Siqueira Jr JF, Rjcas IN, Santos SR, Lima KC, Magalhães FA, Uzeda M. Eficacia de la técnica de instrumentación y regímenes de irrigación en la reducción de la población bacteriana dentro de los conductos radiculares. J Endod 2002;28:181-184.
19. Wu MK, Van Der Sluis LWM, Wesselink PR. La capacidad de dos técnicas de instrumentación manual para eliminar la capa interna de dentina en conductos ovalados. Int Endod J 2003,36:218-224.